干燥方式对槟榔理化特性和抗氧化能力的影响（二） 影响在波长510nm处测定吸光度

1.2.4 活性成分检测

活性成分含量均以干基计。干燥

（1）总黄酮

参照周文菊等报道方法，对槟对上述样品液测定总黄酮含量，榔理力绘制芦丁标准品含量（X，化特化μg）与吸光度（Y）的性和曲线：Y=0.0008X+0.0147，R²=0.9984。抗氧分别吸取1.0mL样品液加入10mL容量瓶中，影响在波长510nm处测定吸光度，干燥根据标准曲线计算各样品总黄酮含量，对槟此时样品中总黄酮含量以芦丁的榔理力当量表示，每个样品平行3次。化特化

（2）总酚

参照Giri等报道方法，性和对上述样品液测定总酚含量，抗氧绘制没食子酸标准品含量（X，影响μg）与吸光度（Y）的干燥曲线：Y=0.0056X+0.0291，R²=0.9991。分别准确吸取1.0mL样品液加入25mL容量瓶中，在波长750nm处测定吸光度，根据标准曲线计算各样品总酚的含量，此时样品中总酚含量以没食子酸的当量表示，每个样品平行3次。

（3）槟榔碱

参考朱晓瑜等报道和《中华人民共和国药典》2015年版方法制备标准品和样品，分别进行高效液相色谱法（HPLC）检测，平行进样3次。检测条件：色谱柱：ZORBAXEclipsePlusC₁₈（150mm×2.1mm，1.8μm）；流动相：乙腈-磷酸溶液（2→1000，浓氨试液调节pH=3.8）（55∶45）；检测波长215nm；流速1mL/min，柱温40℃，进样量为10μL。绘制槟榔碱标准品含量（X，mg/mL）与峰面积（Y）的曲线：Y=6.6821×10⁴X–3.144×10⁴，R²=0.9993。根据标准曲线计算各样品中槟榔碱的含量。

（4）挥发性成分

参照Yuan等报道方法进行样品制备，加入100μL内标溶液（α-蒎烯900μg/mL）。

检测条件：固相微萃取：分别称取各样品1.0g放入进样瓶，将进样瓶放置在90℃温度控制搅拌器中以250r/min转速动态平衡10min；再在上述条件下将萃取头插入进样瓶动态萃取20min；然后GC-MS进样，解吸温度250℃，解吸时间5min，平行进样3次。

GC-MS条件：色谱柱：HP-5ms毛细管色谱柱（30m×0.25mm，0.25μm）；升温程序：70℃保持2min，以10℃/min升至130℃，保持2min，再以15℃/min升至280℃，保持2min；进样口温度280℃；载气（He）流速1mL/min；压力57.4kPa；不分流进样。电子轰击（EI）离子源；离子源温度230℃；接口温度280℃；溶剂延迟3min；数据采集方式Scan；质量扫描范围m/z35～550；检测器增益电压1.34kV。采用内标法计算主要挥发性物质的相对含量。

1.2.5 抗氧化能力

（1）DPPH法。参照张丹等报道的方法，制备样品和DPPH自由基清除实验，每份样品平行3次。按照公式计算清除率：

清除率=[1–(A_样品–A_对照)/A_空白]×100%

式中：A_样品为样品对DPPH作用后的吸光值，A对照为样品本身不加DPPH的吸光值，A空白为DPPH本身在测定波长的吸光值，阳性对照为BHT。

（3）FRAP法：配置0.3mol/LpH3.6的醋酸缓冲液200mL，10mmol/LTPTZ溶液25mL，20mmol/LFeCl₃溶液50mL，上述溶液以10∶1∶1比例混合成工作液现配现用。称取27.8mgFeSO₄，溶解并定容到1mL，此时浓度即为100mmol/L。取适量100mmol/LFeSO₄溶液稀释至0.15、0.3、0.6、0.9、1.2、1.5mmol/L。各样品100μL加入工作液2.4mL，37℃水浴10min后，593nm处测定吸光度。绘制FeSO₄浓度（X，mmol/L）与吸光度（Y）的曲线：Y=0.4334X+0.1188，R²=0.9916，根据标准曲线计算各样品的FRAP值，阳性对照BHT。

1.3 数据处理

采用分析软件IBMSPSSStatistics21进行单因素方差分析（ANOVA）和邓肯多重比较法（Duncan’smultiplerangetest）进行检验，结果以相对含量（平均值±标准误）表示。

2 结果与分析

2.1 干燥方式对槟榔外观形态的影响

2.1.1 失水率

不同干燥方式对槟榔皮层的水分迁徙变化影响见图1。由图可知，槟榔皮层在干燥初期水分减少较快，后期水分减少较慢，直至趋于稳定。这是由于槟榔皮层是多孔性物料，其间有许多毛细管，所以在干燥初期的失水率较高，除去的是毛细管内的非结合水分；而在干燥后期，除去的是壁内的结合水分，这部分水分散失较慢，所以干燥速率低。通过比较得知，微波干燥水分散失较快，最快到达干燥终点，其次是烘干和晒干这类温度提升的干燥方式，风干和冻干由于温度较低，水分脱除耗时较长。

2.1.2 色泽变化

随着水分迁徙，干燥方式对槟榔外皮色泽的影响如图2所示。L*值代表亮度，干燥与鲜槟榔相比均有不同程度的增加，表示亮度越来越高；其中微波干燥出现了先升高后下降的趋势，对比图1可知，亮度在失水率约50%时开始下降。

a^*值代表红绿色度,在负值时表示绿色程度，在正值时表示红色程度。随着干燥程度增加，槟榔表面的绿色度下降，向红色度（正向）提升；冷冻干燥的绿色度下降最小，冻干的干燥方式能较好地保护槟榔表面的绿色；微波干燥的绿色度下降明显，且红色度逐渐增加，根据文献报道，微波干燥过程剧烈致局部温度急剧升高，槟榔表面褐变反应剧烈，呈红色物质增多。

b^*值代表黄蓝色度，在正值时表示黄色程度，干燥过程除风干外较鲜槟榔均有不同程度的降低，表示黄色程度提高。

2.1.3 厚度变化

槟榔皮层厚度随着失水率的增加而逐渐变薄，如图3。冷冻干燥下降幅度最小，厚度保持较好；微波在干燥过程中出现厚度小幅度增加再下降的现象，可能由于在微波干燥过程中，存在加热不均匀现象，导致物料局部过热影响水分迁徙。从图3可见，温度越高的干燥方式，厚度下降的程度越大。

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